小鼠骨髓瘤細胞（Sp2/0-Ag14）介紹：小鼠骨髓瘤細胞（Sp2/0-Ag14）是由綿羊紅細胞免疫的BALB/c小鼠脾細胞和P3X63Ag8骨髓瘤細胞融合得到的。該細胞不分泌免疫球蛋白，對20 μg/ml的8-氮鳥嘌呤有抗性，對HAT比較敏感；小鼠骨髓瘤細胞（Sp2/0-Ag14）可以作為細胞融合時的B細胞組分用于制備雜交瘤；鼠痘病毒陰性。
1） 來源：骨髓瘤
2） 形態：淋巴母細胞樣，圓形，懸浮生長，不要用力吹打(生長時會沉到瓶底）
3） 含量：>1x106
4） 污染：支原體、細菌、酵母和真菌檢測為陰性
5） 規格：T25瓶或者1mL凍存管包裝
運輸和保存：
可選擇干冰運輸及發送復蘇存活細胞方式
（1）干冰運輸，收到后立即轉入液氮或者-80度冰箱凍存或直接復蘇；
（2）存活細胞，收到后應繼續生長，傳代達到細胞生長狀態良好時，再進行凍存。具體操作見細胞培養步驟。
（3）收到細胞后請拍照，3天內如果發現污染，請及時拍照與我們聯系。
小鼠骨髓瘤細胞（Sp2/0-Ag14）用途：僅供科研使用。
小鼠骨髓瘤細胞（Sp2/0-Ag14）接收后的處理：
1） 收到細胞后，請檢查發貨培養瓶的狀況，若發現培養瓶破損、有液溢出及細胞有污染，請拍照后及時聯系我們。
2） 在顯微鏡下確認細胞生長狀態時，最好在低倍鏡（4或5X物鏡)下進行，能準確判斷細胞的傳代密度。看細胞的形態請在10X和20×物鏡下，同時給剛收到的細胞拍照，（10×，20×）各2-3張以及培養瓶外觀照片一張留存，作為細胞需要售后時提供收到細胞時細胞狀態的依據。
3） 觀察好細胞狀態后，75%酒精消毒瓶壁將T25瓶置于37℃培養箱放置約2-3h。
4） 貼壁細胞：在運輸過程中貼壁細胞會有脫落的現象，如發現貼壁細胞有脫落或者脫落后抱團生長，可將T25瓶置于37℃培養箱放置約2-3h，然后抽出瓶中的培養基和未貼壁細胞1000rpm離心5分鐘，棄去上清重懸后接種到加有按照說明書細胞培養條件新配制的完全培養基的原培養瓶中（或新的培養瓶中）。
5） 懸浮細胞：T25瓶置于37℃培養箱放置約2-3h，然后抽出瓶中的培養基和細胞1000rpm離心5分鐘，棄去上清重懸后接種到新的培養瓶中（加入按照說明書細胞培養條件新配制的完全培養基）。
6）備注：運輸用的培養基（灌液培養基）不能再用來培養細胞，請換用按照說明書細胞培養條件新配制的完全培養基來培養細胞。 收到細胞后第一次傳代建議1：2傳代 。
小鼠骨髓瘤細胞（Sp2/0-Ag14）培養步驟：
一．小鼠骨髓瘤細胞（Sp2/0-Ag14）培養基及培養凍存條件準備：
1） 準備DMEM培養基；優質胎牛血清，10%；雙抗，1%。
2） 注意：圓形，懸浮生長，不要用力吹打(生長時會沉到瓶底）
3） 培養條件： 氣相：空氣，95%；二氧化碳，5%。 溫度：37攝氏度，培養箱濕度為70%-80%。
4） 凍存液：90%血清，10%DMSO，現用現配。
二． 細胞處理：
1） 復蘇細胞：將含有1mL細胞懸液的凍存管在37℃水浴中迅速搖晃解凍，離心管加入4mL培養基混合均勻。在800-1000RPM條件下離心4-5分鐘，棄去上清液，補加1-2mL培養基后吹勻。然后將所有細胞懸液加入T25培養瓶中培養，補加培養基至6ml。
2） 細胞傳代：如果細胞密度達80%，即可進行傳代培養。
1. 將細胞懸液按1：2到1:5比例分到新皿中或者瓶中，補加培養基至6ml，放入培養箱繼續培養。
3）細胞凍存：待細胞生長狀態良好時，可進行細胞凍存。
下面T25瓶為例；
1，細胞凍存時，取上清，可使用血球計數板計數。
2，4min ，1000rpm 離心去掉上清。加1ml血清重懸細胞，根據細胞數量加入血清和DMSO，輕輕混勻，DMSO終濃度為10%，細胞密度1-2xE6/ml，每支凍存管凍存1ml細胞懸液，注意凍存管做好標識。
3，將凍存管置于程序降溫盒中，放入-80度冰箱，至少2個小時以后轉入液氮灌儲存。記錄凍存管位置以便下次拿取。
