一、假病毒簡介
慢病毒：慢病毒（Lentivirus，LV）是以HIV-1（人類免疫缺陷I型病毒）為基礎發展起來的基因治療載體，屬于逆轉錄病毒，區別一般的逆轉錄病毒載體，對分裂細胞和非分裂細胞均具有感染能力，可以將外源基因有效地整合到宿主染色體上，從而達到持久性表達。在感染能力方面可有效地感染神經元細胞、肝細胞、心肌細胞、腫瘤細胞、內皮細胞、干細胞等多種類型的細胞，從而達到良好的的基因治療效果，因此具有廣闊的應用前景。
腺病毒：腺病毒(Adenovirus，ADV)是一種沒有包膜的直徑為70～90 nm的病毒顆粒，具有較強的細胞和組織感染能力，腺病毒載體能夠攜帶大容量的基因片段，適用于短時間內高表達的相關實驗，可以快速獲得目的產物，效率高。
腺相關病毒:腺相關病毒（Adeno-associated virus，AAV）,也稱腺伴隨病毒,屬于微小病毒科依賴病毒屬,是目前發現的一類結構最簡單的單鏈DNA缺陷型病毒，需要輔助病毒（通常為腺病毒）參與復制。研究過程中采用的重組腺相關病毒載體(rAAV) 源于非致病的野生型腺相關病毒，由于其安全性好、宿主細胞范圍廣(分裂和非分裂細胞)、免疫源性低，在體內表達外源基因時間長等特點，被視為最有前途的基因轉移載體之一，在世界范圍內的基因治療和疫苗研究中得到廣泛應用。
二、慢病毒的儲存和稀釋
1：儲存條件：-80℃可保存12個月左右，如果超過12個月，則病毒滴度下降可能較多，最好再使用前重新做滴度測定。4℃一般可儲存1-2周。注意：慢病毒使用時要注意避免反復凍融，如需要多次使用，請將病毒分裝后儲存在-80℃。
2：慢病毒稀釋：在使用前，將慢病毒冰浴融化或4℃冰箱融化，融化后放置在冰盒上備用。用完全培養基或
PBS稀釋。稀釋后的病毒請立即使用，不建議再分裝凍存。
3：泰斯拓生物提供的慢病毒滴度單位為TU/ml，即每毫升慢病毒液中含有具有生物活性的慢病毒顆粒數。“TU”為“Transducing-Units”的縮寫，中文為轉導單位，表示可以感染并進入到目標細胞群中的病毒基因組數。如：病毒滴度為1×108TU/ml，即每毫升病毒液中含有1×108個具有生物活性的病毒顆粒。
三、特殊細胞感染注意事項
1：懸浮細胞
懸浮細胞感染可以采用離心感染法，在培養皿中加入病毒后，可以將培養板子密封，然后使用水平轉子1000g離心1h，再放回培養箱中培養，這樣可以增加病毒與懸浮細胞的接觸概率，從而提高感染效率。
2：極難感染的細胞
有些細胞很難感染，那么單次感染之后的效率很低的情況下，可以采用多次反復感染的方法來提高感染效率，即在進行一次感染之后，重新加入新鮮病毒再次感染，一般在加強感染之后，可以顯著提高細胞的感染效率。但在兩次感染之間，要注意調整好細胞狀態，因為病毒在感染細胞之后是存在細胞毒性的，會影響細胞的生長狀態。
3：原代細胞
對于原代細胞，一般細胞生長比較緩慢，且其傳代能力較差，所以在接種的時候，可以提高細胞密度在50%以上。
4：非分裂細胞
對于一些非分裂細胞，其復蘇或接種后細胞不再分裂增殖，所以在進行感染時，細胞的密度得在80%以上，所以在復蘇或者接種時就得注意把細胞密度鋪在80%以上。
最適MOI預實驗
5：貼壁細胞
（1）感染前一天，用胰酶消化目的細胞并計數，然后將細胞接種到96孔板，培養基體積為100µl，使得第二天進行病毒感染時的細胞匯合度20-30%左右。對于大部分細胞，我們通常認為培養24h后細胞數量是鋪板數量的兩倍。
（2）MOI值的設置若有文獻參考，可以參考值為中心設置梯度覆蓋參考值；若無文獻參考可按照MOI 1，10，50，100設置MOI梯度進行摸索。
（3）根據細胞數，按照MOI 1，10，50，100計算出需要加入的病毒滴度（最適MOI預實驗一般選用熒光對照病毒），然后使用含有終濃度為8ug/ml左右的polybrene（Cat.TA003）的完全培養基在對應的EP管里進行稀釋，總體積為100µl。吸掉各孔中上清液，更換為稀釋好的不同MOI的病毒液，混勻，繼續培養。感染后24h后用完全培養基進行換液，過程中觀察細胞形態，發生變化時可以提前到8h換液，保持細胞正常生長。
（4）感染后約72h，觀察感染效率。根據后續實驗內容，選擇合適時間點進行實驗?？砂凑諏嶋H感染情況，校正MOI。
（5）最適MOI的選擇原則：1）：細胞狀態不受影響，2）：盡量用較少的病毒，3）：選擇感染效率80%左右的感染條件作為最佳感染條件。
6：懸浮細胞
（1）感染前一天，制備懸浮細胞懸液，細胞密度約為1*10^5個/ml將細胞接種到96孔板。
（2）MOI值的設置若有文獻參考，可以參考值為中心設置梯度覆蓋參考值；若無文獻參考可按照MOI 1，10，50，100設置MOI梯度進行摸索。
（3）根據細胞數，按照MOI 1，10，50，100計算出需要加入的病毒滴度（最適MOI預實驗一般選用熒光對照病毒），然后使用含有終濃度為16µg/ml左右的polybrene（Cat.TA003）的完全培養基在對應的EP管里進行稀釋，總體積為100µl。然后將不同MOI的病毒稀釋液加到對應的96孔中，混勻，繼續培養。感染后24h后再加入100µl完全培養基，以保持細胞正常生長，過程中觀察細胞形態。
（4）感染后約72h，觀察感染效率。根據后續實驗內容，選擇合適時間點進行實驗。可按照實際感染情況，校正MOI。
（5）最適MOI的選擇原則：1）：細胞狀態不受影響，2）：盡量用較少的病毒，3）：選擇感染效率80%左右的感染條件作為最佳感染條件。
